№6(6) 2023

DOI 10.37219/2528-8253-2023-6-54

Безшапочний СБ, Бондаренко РВ
ВПЛИВ ПОЄДНАННЯ ПЛАЗМИ, ЗБАГАЧЕНОЇ ТРОМБОЦИТАМИ, ТА КВЕРЦЕТИНУ НА УШКОДЖЕННЯ СЛИЗОВОЇ ОБОЛОНКИ ПОРОЖНИНИ НОСА ЗА УМОВ ХРОНІЧНОГО АТРОФІЧНОГО РИНІТУ
Безшапочний Сергій Борисович
Полтавський державний медичний університет
Професор кафедри оториноларингології з офтальмологією
Доктор медичних наук, професор
Email: bezshapochny@ukr.net
ORCID ID:  https://orcid.org/0000-0002-8726-2024
Scopus Author ID: 6603471609
Бондаренко Руслан Валерійович
Полтавський державний медичний університет
Кафедра отоларингології з офтальмологією
Аспірант кафедри
Email: motoman.110494@gmail.com
ORCID ID: https://orcid.org/0000-0002-8497-8123

Анотація

Актуальність: Біологічні бар’єри відіграють важливу роль у функціонуванні організму, захищаючи його від зовнішньої бактеріальної інвазії, перешкоджаючи доступу імунокомпетентних клітин до органів, в яких не сформована імунологічна толерантність (головних мозок, кришталик ока, тканини яєчок та ін.).
Зміна структури слизової оболонки порожнини носа беззаперечно призводить до порушення її функціонування. Атрофічний риніт є хронічним патологічним процесом, який характеризується утворенням сухих кірок у носовій порожнині, що виникає внаслідок прогресуючої атрофії слизової оболонки порожнини носа.

Метою даної роботи є вивчення впливу поєднання плазми, збагаченої тромбоцитами (PRP), та кверцетину на вміст маркерів оксидативного ушкодження біологічних полімерів, концентрацію сірководню та інтенсивність колагенолізу у слизовій оболонці порожнини носа за умов хронічного атрофічного риніту.

Матеріали та методи: До дослідження було включено 73 пацієнтів, яких було відібрано з урахуванням наявності або відсутності скарг на тривалі симптоми, які самостійно не усувалися: сухість, дискомфорт, утворення сухих кірок в порожнині носа, утруднення носового дихання, періодичні кровотечі з порожнини носа, прояви гіпосмії. Усі обстежені пацієнти були розподілені на 2 групи: 1-а (контрольна) група включала в себе осіб без ознак хронічного атрофічного риніту та скарг (n=20); до 2-ї групи (дослідження) (n=53) увійшли пацієнти з ознаками хронічного атрофічного риніту: періодичні носові кровотечі, утворення сухих кірок в порожнині носа, утруднення носового дихання, ознаки гіпосмії.
Пацієнтів групи дослідження було рандомізовано на 2 підгрупи: підгрупа 2А – пацієнти з ознаками ХАР, які отримували стандартне лікування згідно протоколів протягом 28 діб (n=29); підгрупа 2Б – пацієнти з ознаками ХАР, які отримували стандартне лікування згідно протоколів та додатково – PRP-терапію та перорально препарат на основі кверцетину в дозі 40 мг кверцетину 3 рази на добу протягом 28 діб (n=24).
В слизовій оболонці порожнини носа досліджували вміст вільного L-оксипроліну, концентрацію малонового діальдегіду, концентрацію сірководню (H2S) та вміст окисно-модифікованих білків.

Результати: Застосування PRP-терапії та кверцетину у комплексі зі стандартною терапією хронічного атрофічного риніту призводить до зниження вмісту малонового діальдегіду у слизовій оболонці порожнини носа на 57,75%, вміст окисно модифікованих білків після лікування знижується на 55,05% порівняно із показниками до лікування. Концентрація вільного L-оксипроліну у слизовій оболонці порожнини носа при застосуванні PRP-терапії та кверцетину у комплексі зі стандартною терапією хронічного атрофічного риніту знижується на 53,02% порівняно з показниками до лікування. Вміст H2S у слизовій оболонці порожнини носа знижується на 61,02% порівняно з показниками до лікування.

Висновки: Застосування PRP-терапії та кверцетину на фоні стандартної терапії хронічного атрофічного риніту посилює ефективність лікування за рахунок зменшення оксидативного ушкодження ліпідів та білків, а також знижує розпад колагену та обмежує накопичення H2S у слизовій оболонці порожнини носа.

Ключові слова: атрофічний риніт; плазма, збагачена тромбоцитами; перекисне окиснення ліпідів; L-оксипролін; сульфід гідрогену; кверцетин.

Література

  1. Mishra A, Kawatra R, Gola M. Interventions for atrophic rhinitis. Cochrane Database Syst Rev. 2012; (2): CD008280. doi: 10.1002/14651858.CD008280.pub2.
  2. Liva GA, Karatzanis AD, Prokopakis EP. Review of Rhinitis: Classification, Types, Pathophysiology. J Clin Med. 2021; 10(14): 3183. doi: 10.3390/jcm10143183.
  3. Zhu S, Li X, Dang B, Wu F, Wang C, Lin C. Lycium Barbarum polysaccharide protects HaCaT cells from PM2.5-induced apoptosis via inhibiting oxidative stress, ER stress and autophagy. Redox Rep. 2022;27(1):32-44. doi: 10.1080/13510002.2022.2036507.
  4. Mihalj H, Butković J, Tokić S, Štefanić M, Kizivat T, Bujak M, Baus Lončar M, Mihalj M. Expression of Oxidative Stress and Inflammation-Related Genes in Nasal Mucosa and Nasal Polyps from Patients with Chronic Rhinosinusitis. Int J Mol Sci. 2022;23(10):5521. doi: 10.3390/ijms23105521.
  5. Tai J, Shin JM, Park J, Han M, Kim TH. Oxidative Stress and Antioxidants in Chronic Rhinosinusitis with Nasal Polyps. Antioxidants (Basel). 2023;12(1):195. doi: 10.3390/antiox12010195.
  6. Kostenko V, Akimov O, Gutnik O, Kostenko H, Kostenko V, Romantseva T, Morhun Y, Nazarenko S, Taran O. Modulation of redox-sensitive transcription factors with polyphenols as pathogenetically grounded approach in therapy of systemic inflammatory response. Heliyon. 2023;9(5):e15551. doi: 10.1016/j.heliyon.2023.e15551.
  7. Kim DH, Lee MH, Lee J, Song EA, Kim SW, Kim SW. Platelet-Rich Plasma Injection in Patients with Atrophic Rhinitis. ORL J Otorhinolaryngol Relat Spec. 2021;83(2):104-111. doi: 10.1159/000513099.
  8. Akimov OYe, Mischenko AV, Kostenko VO. Influence of combined nitrate and fluoride intoxication on connective tissue disorders in rats gastric mucosa. Archives of Balkan Medical Union. 2019;54(3):417-422. doi: 10.31688/ABMU.2019.54.3.03.
  9. Mykytenko AO, Akimov OY, Neporada KS. Influence of lipopolysaccharide on the development of oxidative-nitrosative stress in the liver of rats under conditions of chronic alcohol intoxication. Fiziol Zh. 2022;68(2):29-35. doi: 10.15407/fz68.02.029.
  10. Beregova TV, Neporada KS, Skrypnyk M, Falalyeyeva TM, Zholobak NM, Shcherbakov OB, Spivak MY, Bubnov RV. Efficacy of nanoceria for periodontal tissues alteration in glutamate-induced obese rats-multidisciplinary considerations for personalized dentistry and prevention. EPMA J. 2017 Mar 14;8(1):43-49. doi: 10.1007/s13167-017-0085-7.
  11. Qi W, Qi W, Xiong D, Long M. Quercetin: Its Antioxidant Mechanism, Antibacterial Properties and Potential Application in Prevention and Control of Toxipathy. Molecules. 2022;27(19):6545. doi: 10.3390/molecules27196545.
  12. Deepika, Maurya PK. Health Benefits of Quercetin in Age-Related Diseases. Molecules. 2022;27(8):2498. doi: 10.3390/molecules27082498.
  13. Oneto P, Etulain J. PRP in wound healing applications. Platelets. 2021;32(2):189-199. doi: 10.1080/09537104.2020.1849605.
  14. Tognoloni A, Bartolini D, Pepe M, Di Meo A, Porcellato I, Guidoni K, Galli F, Chiaradia E. Platelets Rich Plasma Increases Antioxidant Defenses of Tenocytes via Nrf2 Signal Pathway. Int J Mol Sci. 2023;24(17):13299. doi: 10.3390/ijms241713299.
  15. Murphy B, Bhattacharya R, Mukherjee P. Hydrogen sulfide signaling in mitochondria and disease. FASEB J. 2019 Dec;33(12):13098-13125. doi: 10.1096/fj.201901304R.
  16. Yassin-Kassab A, Bhargava P, Tibbetts RJ, Griggs ZH, Peterson EI, Craig JR. Comparison of bacterial maxillary sinus cultures between odontogenic sinusitis and chronic rhinosinusitis. Int Forum Allergy Rhinol. 2021 Jan;11(1):40-47. doi: 10.1002/alr.22627.
  17. Lin W, Xie L, Zhou L, Zheng J, Zhai W, Lin D. Effects of platelet-rich plasma on subchondral bone marrow edema and biomarkers in synovial fluid of knee osteoarthritis. Knee. 2023 Jun;42:161-169. doi: 10.1016/j.knee.2023.03.002.
  18. Huynh CB, Nagaarudkumaran N, Kalyaanamoorthy S, Ngo W. In Silico and In Vitro Approach for Validating the Inhibition of Matrix Metalloproteinase-9 by Quercetin. Eye Contact Lens. 2023;49(5):193-198. doi: 10.1097/ICL.0000000000000982.
  19. Lee SJ, Lee AY, Pak SW, Kim WI, Yang YG, Lim JO, Chae SW, Cho YK, Kim JC, Moon BC, Seo YS, Shin IS. Protective effects of Angelica decursiva Franchet & Savatier on allergic responses through enhancement of Nrf2 and suppression of NF-kB/MMP-9 in ovalbumin-exposed mice. J Ethnopharmacol. 2024 Jan 10;318(Pt A):116863. doi: 10.1016/j.jep.2023.116863.
  20. Sul OJ, Ra SW. Quercetin Prevents LPS-Induced Oxidative Stress and Inflammation by Modulating NOX2/ROS/NF-kB in Lung Epithelial Cells. Molecules. 2021 Nov 17;26(22):6949. doi: 10.3390/molecules26226949.